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豬輪狀病毒核酸檢測試劑盒簡介

更新時間:2025-09-02點擊次數(shù):107

 【產(chǎn)品名稱】

  通用名稱:豬輪狀病毒檢測試劑盒(實時熒光PCR法)

  英文名稱Porcine Rota virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】25T/& 50T/

【預期用途】

本試劑盒利用實時熒光PCR原理,定性檢測輪狀病毒,對輪狀病毒引起的胃腸炎及其并發(fā)癥的診斷及療效評估有重要指導意義。

【檢驗原理】

本試劑盒針豬輪狀病毒組高度保守區(qū)域設計特異性引物和探針,在反應體系中含豬輪狀病毒模板的情況下,PCR反應得以進行并釋放熒光信號。利用儀器對PCR過程中相應通道的信號強度進行實時監(jiān)測和輸出,實現(xiàn)檢測結果的定性分析。

【主要組成成份】

序號

組成

25T/

50T/

1

PRV  RT-PCR反應液

437.5 μL×1

875 μL×1

2

PRV混合

 62.5 μL×1

125 μL×1

3

PRV性對照

 40 μL×1

 40 μL×1

4

PRV陰性對照

 40 μL×1

 40 μL×1

5

說明書

1

1

注:陰性對照為滅菌純水,陽性對照為PRV 靶基因的質(zhì)粒。

【儲存條件及有效期】避光-20以下保存,避免反復凍融,有效期12個月。

【適用儀器】ABI 系列、Bio-Rad系列、Agilent Stratagene MX系列 、Roche LightCycler 480Cepheid SmartCycler、Rotor-Gene系列、杭州博日系列等多通道實時熒光定量PCR儀。

【樣本要求】

1.采集時間:采集患兒發(fā)病3日內(nèi)或入院24小時,且未服藥之前的糞便標本。

2.采集方法

 自然排便采集法:自然排便后,收集糞便標本每份510g左右;應放置在無菌容器中,貼上帶有唯yi識別碼的標簽;

 直腸拭子法:對難以獲得糞便或排便困難的患者及嬰幼兒,可采用直腸拭子法采集標本,標本采集完后插入無菌試管待檢;

3.應避免標本間交叉污染;

4.標本采集完畢后若不能立即檢測,可放置于-20的冰箱中保存,避免標本反復凍融。

【檢驗方法】

1. 試劑準備(試劑準備區(qū))

1)從冰箱中取出試劑盒, 從試劑盒中取出實驗所需試劑,充分融化混勻并瞬時離心以去除管壁附著液體。

2)核算當次實驗所需要的反應數(shù)(n),并根據(jù)如下表所示反應體系計算當次實驗所需要的各種試劑量。

n =陰性對照數(shù)(1T+陽性對照數(shù)(1T+誤差預留量(1T+樣本數(shù)

單反液配制表(每份)

RT-PCR反應液

17.5 μL

混合酶液

 2.5 μL

3)在無菌離心管中加入上述試劑,充分混勻后瞬時離心。按照20 μL/管分裝量將試劑分裝至PCR反應管。

2.樣本準備(樣本處理區(qū))

DNA/RNA提取試劑盒提取核酸即可,具體操作按照其試劑盒說明書操作。

3.加樣

在上述制備好的PCR反應樣本管中分別加入處理好的待測標本RNA5 μl、終體積25 μl/管,蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心,轉(zhuǎn)移到PCR儀器上。陰性對照和陽性對照管則各加5 μL試劑盒自帶的陰性對照或陽性對照品,終體積為25 μl/管,蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心,轉(zhuǎn)移到PCR儀器上。

4.PCRPCR擴增區(qū))

1)取樣本處理區(qū)準備好的PCR反應管,放置在實時熒光定量PCR儀樣品槽相應位置,并記錄放置順序。

2)按下表設置儀器核酸擴增相關參數(shù)進行PCR擴增。

 

 

反應體積

25 μL

通道選擇

FAM通道采集 PRV 熒光信號

PCR

反應

條件

步驟

條件

循環(huán)數(shù)

反轉(zhuǎn)錄

 5010分鐘(min

1

預變性

953分鐘(min

1

PCR擴增

955秒(s

40

5540秒(s

(此階段結束時采集熒光信號)

 

注:ABI系列熒光PCR儀在設置時不選ROX校正,設置淬滅基團選擇None

【參考值(參考范圍)】

1.試劑盒有效性判定:

1)陽性對照:有典型S型擴增曲線或Ct≤35。

2)陰性對照:Ct值>38或無Ct值,線形為直線或輕微斜線,無指數(shù)增長期。

2.標本結果判定:

1陽性:標本檢測結果Ct≤35或有明顯指數(shù)增長期。

2)可疑:標本檢測結果Ct值在3538范圍內(nèi)。此時應對標本進行重復檢測,如重復實驗結果Ct值仍在3538范圍內(nèi),有明顯指數(shù)增長期,則判定為陽性,否則為陰性。

3)陰性:標本檢測結果Ct值>38或無Ct值。

【檢驗結果的解釋】

通道及檢測結果

標本檢測結果解釋

FAM

陽性(+)

標本中檢PRV  

陰性(-)

標本中檢出PRV  

【檢驗方法的局限性】

1. 當檢測樣本中被檢核酸濃度低于本試劑盒的最di檢出限shi可能會發(fā)生假陰性的結果。

2. 被檢樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中操作方式不當容易造成RNA降解而產(chǎn)生假陰性結果。

3. 樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中發(fā)生交叉污染,則容易得到假陽性結果。

【產(chǎn)品性能指標】 產(chǎn)品的最di檢出限為103Copies/mL,產(chǎn)品CV3%。

【注意事項】

1. 使用本試劑盒的實驗室,應嚴格按照國家有關部分頒布的有關基因擴增檢驗實驗室管理規(guī)范進行管理;

2. 為避免RNA降解,樣本處理過程應在0-4℃條件下操作,且完成實驗后立即上機檢測;樣本處理過程中使用的器具耗材應經(jīng)過無核酶處理;

3. 各區(qū)域物品均為專用,不得交叉使用,以免污染檢測結束后,應立即對工作臺清潔;

4. 吸取反應液時,應盡量避免產(chǎn)生氣泡; PCR 儀前,應注意檢查各反應管是否蓋緊,以免液體蒸發(fā)造成結果不準確;

5. 試劑盒所有試劑在使用前應該在常溫下充分融化混勻,并應瞬時離心;

6. 試劑盒內(nèi)所配陰性和陽性對照在第一次使用前應全部轉(zhuǎn)移至標本準備區(qū),并單獨存放

7. 為防止熒光干擾,應避免裸手直接接觸PCR反應管,并應避免在PCR反應管上進行任何標記;

8. 檢測過程中使用過的吸頭,應直接打到盛有 10%次氯酸的廢物缸內(nèi),檢測結束的PCR 反應管,切忌開蓋,并與其他廢棄物品一同滅菌后丟棄;工作臺及各種實驗用品應定期用 10%次氯酸、75%酒精或紫外燈進行消毒

9. 儀器擴增相關參數(shù)應按照本說明書相關要求進行設置;不同批號試劑不能混用;并在有效期內(nèi)使用。

 


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